隨著分子生物學和細胞生物學研究的不斷發展,細胞轉染已經成為研究真核細胞基因功能的常規工具。常用于研究基因功能、基因表達調控、突變分析和蛋白質生產等生物學試驗中,其應用非常廣泛。既然細胞轉染如此重要,那影響細胞轉染效率的因素有哪些?讓我們一起來看看吧!
一、轉染試劑
不同細胞系轉染效率通常不同,因此在轉染實驗前需要根據細胞特性選擇合適的轉染試劑??梢酝ㄟ^已發表文獻和轉染試劑提供的已成功轉染的細胞株來進行選擇。
二、細胞狀態
轉染前細胞活力和總體健康狀況是轉染產生變異性的重要來源。一般建議在轉染前至少24小時進行傳代培養,以確保細胞在傳代后處于轉染的最佳生理條件,細胞活力大于 90%。最shi合轉染的細胞是復蘇經過幾次傳代后達到指數生長期的細胞,細胞生長旺盛,最容易轉染。為確保轉染的重復性,一般選擇低細胞代次(<30,能確?;蛐筒蛔儯?。如果發現同一株細胞轉染效率降低,可以嘗試重新復蘇細胞以恢復最佳結果。此外,污染會嚴重影響轉染結果。
三、匯合度
轉染時過高或者過低的細胞密度會導致轉染效率降低,乃至表達水平偏低。因此要根據具體的細胞類型、應用和轉染技術,來優化確定相應的最佳密度。如使用陽離子脂質體轉染時,貼壁細胞一般達到 70%-90% 的匯合度,懸浮細胞達到 5 × 105 至 2 × 106 個細胞/mL 的密度,即可獲得良好的結果。但不同的轉染試劑,針對不同細胞系要求轉染時的最適細胞密度各不相同,因此使用新的細胞系或者新的轉染試劑時,應進行實驗優化并建立一個穩定方法,包括適當的接種量和培養時間等等。不同實驗目的也會影響轉染時的鋪板密度,比如研究細胞周期相關基因等表達周期長的基因,就需要較低的鋪板密度,所以需要選擇能夠在較低鋪板密度下進行轉染的試劑。
四、培養基
不同的細胞或細胞類型都有非常特定的培養基、血清、補充劑要求,選擇最shi合細胞類型的培養基和轉染方法在轉染實驗中起著非常重要的作用。一些細胞系和原代細胞可能需要特殊的包被材料(如多聚賴氨酸、膠原蛋白、纖連蛋白等)以附著于培養板并獲得最佳的轉染結果。
五、血清
一般培養基中存在血清可增強 DNA 轉染。但使用陽離子脂質體轉染時,一些血清蛋白會干擾復合物的形成,因此應在無血清條件下制備DNA-脂質體復合物。當使用 RNA 轉染細胞時,建議在無血清條件下轉染,以避免潛在的RNase污染。
六、抗生素
一般用于瞬時轉染的培養基中可含抗生素。不過,由于陽離子脂質體試劑可增加細胞通透性,因此也可能增加遞送到細胞內的抗生素量,從而導致細胞毒性以及較低的轉染效率。因此不建議在轉染培養基中加入抗生素??稍谵D染前鋪板細胞時,使用無抗生素的培養基。
對于穩定轉染,不應在選擇性培養基中使用青霉素和鏈霉素,因為這些抗生素是 Gibco Geneticin 選擇性抗生素的競爭性抑制劑。在構建穩定的細胞系時,在轉染程序后預留 48-72 小時供細胞表達抗性基因,之后再加入選擇性抗生素。
七、轉染分子類型
質粒 DNA 是最chang用的轉染載體。質粒 DNA 的拓撲結構(線性或超螺旋)和大小會影響轉染的效率,超螺旋質粒 DNA 瞬時轉染的效率zui高。在穩定轉染中,相對于超螺旋 DNA,雖然使用線性 DNA 會導致細胞的 DNA 攝取量較低,但 DNA 整合到宿主基因組中的效果更優。雖然寡核苷酸、RNA、siRNA 和蛋白質等其他大分子也可以轉染到細胞中,但在使用這些大分子時,需要優化轉染條件。
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